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首頁(yè)探討與進(jìn)展 CCL5/CCR5生物軸在涎腺腺樣囊性癌細(xì)胞嗜神經(jīng)侵襲中的作用 科貿(mào)嘉友收錄

CCL5/CCR5生物軸在涎腺腺樣囊性癌細(xì)胞嗜神經(jīng)侵襲中的作用 科貿(mào)嘉友收錄

2017年10月24日14:25  人氣:-

[摘要]

目的

探討CCL5/CCR5生物軸在涎腺腺樣囊性癌(SACC)細(xì)胞嗜神經(jīng)侵襲中的作用。方法 應(yīng)用細(xì)胞免疫熒光技術(shù)和流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)SACC-LM細(xì)胞中趨化因子受體CCR5的表達(dá);應(yīng)用酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)法檢測(cè)周?chē)窠?jīng)細(xì)胞培養(yǎng)上清液中趨化因子CCL5的表達(dá)。應(yīng)用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)CCL5對(duì)SACC-LM細(xì)胞內(nèi)F肌動(dòng)蛋白的作用,并通過(guò)劃痕和侵襲實(shí)驗(yàn)觀察趨化因子CCL5和其受體CCR5對(duì)SACC-LM細(xì)胞運(yùn)動(dòng)能力和侵襲能力的作用。結(jié)果 SACC-LM細(xì)胞高表達(dá)趨化因子受體CCR5;周?chē)窠?jīng)原代培養(yǎng)上清液中趨化因子CCL5質(zhì)量濃度為(359.2±15.8)、(696.4±22.6) pg·mL-1;趨化因子CCL5和其受體CCR5結(jié)合后對(duì)SACC-LM細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)能力和侵襲能力可以產(chǎn)生促進(jìn)作用。結(jié)論 CCL5/CCR5生物軸可能在SACC細(xì)胞嗜神經(jīng)侵襲中起著重要的作用。

[關(guān)鍵詞]

唾液腺; 涎腺腺樣囊性癌; CCL5; CCR5; 嗜神經(jīng)侵襲

涎腺腺樣囊性癌(salivary adenoid cystic carcinoma,SACC)是一種較少見(jiàn)的惡性腫瘤,對(duì)周?chē)窠?jīng)侵襲的傾向性被視為SACC的特征性生物學(xué)行為之一[1]。在臨床上,周?chē)窠?jīng)侵襲(peripheral nerve invasion,PNI)與SACC的擴(kuò)散、復(fù)發(fā)和預(yù)后密切相關(guān)[2-3]。在對(duì)SACC周?chē)窠?jīng)侵襲性的研究中,國(guó)內(nèi)外學(xué)者已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了許多相關(guān)蛋白分子,但仍不能完全解釋SACC嗜神經(jīng)侵襲的機(jī)制,隨著“腫瘤微環(huán)境”學(xué)說(shuō)的出現(xiàn),學(xué)者們逐漸將其機(jī)制的研究回歸系統(tǒng)化,而不再考慮單一蛋白分子的作用。因此,為了更好地詮釋PNI的作用機(jī)制,需要有更多的相關(guān)蛋白質(zhì)被發(fā)現(xiàn)和研究,以完善PNI的“侵襲相關(guān)系統(tǒng)”。

Virchow于1863年首先報(bào)告慢性炎癥與腫瘤之間存在密切的關(guān)系[4]。近幾年隨著炎癥因子與腫瘤之間關(guān)系研究的不斷深入,趨化因子與腫瘤轉(zhuǎn)移的相關(guān)研究越來(lái)越受到人們的重視。申志遠(yuǎn)等[5]通過(guò)對(duì)臨床病理標(biāo)本的研究發(fā)現(xiàn):趨化因子受體CCR5在人SACC組織中高表達(dá),且與SACC的嗜神經(jīng)侵襲性密切相關(guān)。本研究旨在以前期病理標(biāo)本研究為基礎(chǔ),通過(guò)細(xì)胞實(shí)驗(yàn)觀察趨化因子CCL5/CCR5生物軸對(duì)SACC細(xì)胞系SACC-LM的趨化性和侵襲性的作用,為CCL5/CCR5生物軸在SACC的PNI中的作用研究提供進(jìn)一步的理論依據(jù)。


1,材料和方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

兔抗人多克隆抗體和CCL5酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)檢測(cè)試劑盒、FITC標(biāo)記的熒光二抗(PeproTech公司,美國(guó));Transwell小室(Corning公司,美國(guó));Matrigel膠(BD公司,美國(guó));人重組活性蛋白CCL5(上海普欣公司);羅丹明標(biāo)記的鬼筆環(huán)肽抗體(Sigma公司,美國(guó))。

1.2 方法

1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)

將人SACC細(xì)胞系SACC-LM(圖1)置于含有10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液中,37 ℃,5%CO2孵育箱條件下培養(yǎng)。術(shù)中頸淋巴組織清掃所得人周?chē)窠?jīng)在無(wú)菌條件下采用組織塊法進(jìn)行原代培養(yǎng),僅收集細(xì)胞培養(yǎng)的上清液。

1.jpg

1.2.2 細(xì)胞免疫熒光法檢測(cè)趨化因子受體CCR5在SACC-LM細(xì)胞中的表達(dá)

將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的SACC-LM細(xì)胞接種至12 mm×12 mm的小方片上,孵育箱內(nèi)孵育24 h,采用PBS清洗3次,4%的多聚甲醛進(jìn)行固定15 min,PBS再次清洗3次,0.5%Triton X-100覆蓋細(xì)胞,37 ℃孵育10 min,PBS洗滌3次后孵育一抗,即采用1%的BSA將一抗稀釋至所需濃度(1︰100稀釋),滴加至小方片上將細(xì)胞覆蓋。置于4 ℃冰箱內(nèi)過(guò)夜后次日37 ℃條件下復(fù)溫30 min,PBS洗滌3次,然后孵育熒光二抗工作液,將熒光二抗工作液滴加至細(xì)胞表面,37 ℃避光孵育2 h,PBS清洗3次,DAPI染色并置于37 ℃

避光環(huán)境下再次孵育15 min,最后避光條件下,PBS清洗3次后,將小方片置于熒光顯微鏡下觀察,以PBS代替一抗稀釋液組作為空白對(duì)照組。


1.2.3 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)趨化因子受體CCR5在SACC-LM細(xì)胞中的表達(dá)

取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,棄培養(yǎng)液后用PBS清洗2次,0.25%胰蛋白酶消化細(xì)胞,采用含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液中和胰蛋白酶,1 000 r·min-1離心5 min,棄上清液后再加入含3%胎牛血清的PBS離心清洗1次,將細(xì)胞重懸后轉(zhuǎn)移至1.5 mL的EP管中,1 000 r·min-1離心5 min沉淀細(xì)胞后,加入100 μL一抗稀釋液(1︰100),置于37 ℃恒溫孵育箱中孵育30 min,PBS離心清洗2次,加入FITC標(biāo)記的熒光二抗稀釋液,37 ℃孵育箱中避光孵育30 min,PBS離心清洗2次,4%多聚甲醛固定樣本。以未加一抗稀釋液組作為空白對(duì)照組。


1.2.4 ELISA法測(cè)定人周?chē)窠?jīng)細(xì)胞原代培養(yǎng)上清液中趨化因子CCL5的含量

手術(shù)切取的周?chē)窠?jīng)標(biāo)本無(wú)菌操作下立即放于含有1 000 U·L-1雙抗液的培養(yǎng)基內(nèi),常溫下放置5 min。顯微鏡下去凈神經(jīng)組織周?chē)难獕K及黏膜,用組織剪剪成約1 mm×1 mm×1 mm的小塊,貼于25 mL塑料培養(yǎng)瓶壁上,加入適量的含15%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,37 ℃恒溫貼壁2 h后翻瓶并加入適量的培養(yǎng)液。細(xì)胞爬出后,PBS液清洗3次,加入無(wú)血清的培養(yǎng)液培養(yǎng)2 h,將培養(yǎng)液棄掉更換無(wú)血清培養(yǎng)液后培養(yǎng)12 h和24 h,并分別收集上清液。采用CCL5檢測(cè)試劑盒檢測(cè)樣品中的CCL5表達(dá)量。以新鮮的無(wú)血清DMEM培養(yǎng)液作為陰性對(duì)照,按試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。每個(gè)樣品ELISA法至少檢測(cè)3個(gè)孔,均數(shù)間的比較采用t檢驗(yàn)。


1.2.5 流式細(xì)胞儀檢測(cè)SACC-LM細(xì)胞經(jīng)CCL5處理前后細(xì)胞內(nèi)F肌動(dòng)蛋白量的變化

取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,棄培養(yǎng)液后用PBS清洗2次,0.25%胰蛋白酶消化細(xì)胞,用含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液中和胰蛋白酶,1 000 r·min-1離心5 min,棄上清液后再加入含3%胎牛血清的PBS離心清洗1次,將細(xì)胞重懸后轉(zhuǎn)移至1.5 mL的EP管中,1 000 r·min-1離心5 min沉淀細(xì)胞后,加入濃度為100 ng·mL-1的CCL5無(wú)血清RPMI1640(200 μL),37 ℃孵育30 min后,離心洗滌2次,滴加羅丹明標(biāo)記的鬼筆環(huán)肽抗體(1︰100稀釋)并重懸,37 ℃避光孵育30 min,利用流式細(xì)胞儀檢測(cè)熒光強(qiáng)度平均值。以加入無(wú)血清RPMI1640(200 μL)作為空白對(duì)照組。


1.2.6 劃痕實(shí)驗(yàn)觀察CCL5對(duì)SACC-LM細(xì)胞運(yùn)動(dòng)能力的影響

將細(xì)胞以每孔2×105個(gè)的密度接種于24孔培養(yǎng)板中,待細(xì)胞長(zhǎng)到單層完全融合時(shí),用10 μL Tip槍頭在單層細(xì)胞上劃痕,建立細(xì)胞劃痕模型,并用PBS清洗2次。加入含CCL5(20 ng·mL-1)的無(wú)血清RPMI1640培養(yǎng)基,37 ℃孵育箱內(nèi)繼續(xù)培養(yǎng),用倒置顯微鏡于0、48 h觀察劃痕愈合程度。以單純加入無(wú)血清RPMI1640培養(yǎng)基作為空白對(duì)照組。


1.2.7 侵襲實(shí)驗(yàn)觀察CCL5對(duì)SACC-LM細(xì)胞侵襲能力的影響

Transwell小室內(nèi)為孔徑8 μm的多聚碳酸酯膜,用Matrigel膠(1︰5稀釋)包被后放置于專用的24孔細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi),選用對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的SACC-LM細(xì)胞,血清饑餓12 h后,將細(xì)胞放于上室內(nèi),在下室中,加入600 μL含不同濃度趨化因子CCL5的無(wú)血清RPMI 1640培養(yǎng)液(0、10、20、50、100、300、500 ng·mL-1),并將培養(yǎng)板置于孵育箱內(nèi)孵育12 h。每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔,以在下孔中加入不含CCL5的無(wú)血清RPMI1640培養(yǎng)液作為空白對(duì)照組。取出嵌套小室,將上室多聚碳酸酯膜內(nèi)面的細(xì)胞用棉簽擦凈,將膜底面的細(xì)胞用多聚甲醛固定,并用蘇木素和伊紅進(jìn)行細(xì)胞染色,顯微鏡下讀取多聚碳酸酯膜底面穿過(guò)的細(xì)胞數(shù)目。統(tǒng)計(jì)學(xué)處理:于放大200倍光學(xué)顯微鏡下選取5個(gè)視野,記錄穿過(guò)多聚碳酸酯膜的細(xì)胞總數(shù)。


1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件包對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。P<0.05說(shuō)明研究結(jié)果的差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。


2 ,結(jié)果

2.1 細(xì)胞免疫熒光法和流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)趨化因子受體CCR5在SACC-LM細(xì)胞中的表達(dá)結(jié)果

細(xì)胞免疫熒光法和流式細(xì)胞術(shù)均發(fā)現(xiàn)SACC-LM細(xì)胞可以表達(dá)趨化因子受體CCR5(圖2)。

2.jpg

由圖2可見(jiàn),在細(xì)胞免疫熒光實(shí)驗(yàn)中,熒光顯微鏡下觀察趨化因子受體CCR5表達(dá)陽(yáng)性的細(xì)胞,呈現(xiàn)出綠色熒光;利用CCR5抗體+流式細(xì)胞術(shù)同樣發(fā)現(xiàn)SACC-LM細(xì)胞有趨化因子受體CCR5的表達(dá),其陽(yáng)性表達(dá)率為81.9%。


2.2 ELISA測(cè)定結(jié)果

ELISA法測(cè)定人周?chē)窠?jīng)細(xì)胞原代培養(yǎng)上清液中趨化因子CCL5的表達(dá)量為(359.2±15.8)、(696.4±22.6) pg·mL-1,均比空白對(duì)照組多(P<0.05)(圖3)。

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2.3 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)F肌動(dòng)蛋白量的變化

加入趨化因子CCL5孵育30 min后,利用流式細(xì)胞儀檢測(cè)SACC-LM細(xì)胞內(nèi)F肌動(dòng)蛋白的熒光表達(dá)強(qiáng)度,進(jìn)而反應(yīng)細(xì)胞內(nèi)F肌動(dòng)蛋白量的多少。實(shí)驗(yàn)組中F肌動(dòng)蛋白的熒光表達(dá)強(qiáng)度為82.8%,明顯高于空白對(duì)照組(圖4)。

4.jpg

2.4 劃痕實(shí)驗(yàn)和侵襲實(shí)驗(yàn)結(jié)果

相同時(shí)間段內(nèi)實(shí)驗(yàn)組SACC-LM細(xì)胞劃痕模型的愈合速度明顯高于空白對(duì)照組(圖5);侵襲實(shí)驗(yàn)中,加入趨化因子CCL5后各實(shí)驗(yàn)組穿越PC膜的細(xì)胞數(shù)目均有明顯上升,當(dāng)趨化因子CCL5的濃度為20 ng·mL-1時(shí),穿越PC膜的細(xì)胞數(shù)最多(圖6)。

5.jpg

6.jpg

3,討論

惡性腫瘤細(xì)胞的侵襲和轉(zhuǎn)移是一個(gè)連續(xù)的、復(fù)雜的、系統(tǒng)性的過(guò)程,具有高度的特異性,雖然國(guó)內(nèi)外學(xué)者已經(jīng)證明惡性腫瘤細(xì)胞的侵襲和轉(zhuǎn)移是一個(gè)多因素參與的過(guò)程,但不同組織學(xué)類型的惡性腫瘤進(jìn)行特定的侵襲和轉(zhuǎn)移的分子機(jī)制尚不清楚。趨化

因子可以調(diào)控細(xì)胞的遷移,其與相應(yīng)受體的結(jié)合可以引起細(xì)胞骨架蛋白的改變,使得細(xì)胞形成更多的偽足,進(jìn)而促進(jìn)了細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)性,這是惡性腫瘤發(fā)生侵襲和轉(zhuǎn)移的前提條件[6-7]。隨著趨化因子研究的不斷深入,其在惡性腫瘤中的作用已經(jīng)被多數(shù)

學(xué)者作為“腫瘤微環(huán)境學(xué)說(shuō)”的重要機(jī)制之一。趨化因子CCL5,屬于CC趨化因子家族的成員,具有介導(dǎo)免疫細(xì)胞定向趨化的作用[8-9],其受體有3個(gè),分別是CCR1、CCR3和CCR5,其中以CCL5與CCR5的親和力最強(qiáng),構(gòu)成了CCL5/CCR5生物軸。國(guó)內(nèi)外許多

學(xué)者[10-11]認(rèn)為趨化因子CCL5和其受體CCR5在惡性腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移中扮演著重要的角色。有研究[11-12]表明,趨化因子CCL5與前列腺癌、胰腺癌及乳腺癌的侵襲與轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。研究[13-15]發(fā)現(xiàn)CCL5/CCR5生物軸可引起乳腺癌細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞骨架蛋

白的重排,使細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)性增加,促進(jìn)了癌細(xì)胞的浸潤(rùn)與轉(zhuǎn)移。在筆者前期的實(shí)驗(yàn)[16]中,發(fā)現(xiàn)CCL5/CCR5生物軸存在于人唾液腺SACC和周?chē)窠?jīng)之間的“微環(huán)境”中,并且通過(guò)體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)證明趨化因子CCL5可以明顯地促進(jìn)SACC細(xì)胞的趨化和侵襲能

力,這說(shuō)明CCL5/CCR5生物軸可能在SACC易侵襲周?chē)窠?jīng)中起著重要作用。但是,CCL5/CCR5生物軸在SACC細(xì)胞嗜神經(jīng)侵襲中的具體分子作用機(jī)制尚需進(jìn)一步的研究。

綜上所述,本研究通過(guò)細(xì)胞免疫熒光技術(shù)證實(shí)了趨化因子受體CCR5在SACC-LM細(xì)胞中的存在,利用ELISA法檢測(cè)到了周?chē)窠?jīng)細(xì)胞可以外分泌趨化因子CCL5。為了觀察趨化因子CCL5對(duì)SACC-LM細(xì)胞運(yùn)動(dòng)能力的影響,筆者通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)到趨化因子

CCL5促進(jìn)了SACC-LM細(xì)胞內(nèi)F肌動(dòng)蛋白的增多,這是細(xì)胞運(yùn)動(dòng)性增強(qiáng)的標(biāo)志之一;而后又在劃痕、侵襲實(shí)驗(yàn)中,從宏觀角度觀察到了CCL5/CCR5生物軸對(duì)SACC-LM細(xì)胞遷移及侵襲能力的促進(jìn)作用。以上結(jié)果說(shuō)明CCL5/CCR5生物軸在SACC細(xì)胞嗜神經(jīng)侵襲中可

能扮有重要的角色,有利于進(jìn)一步研究唾液腺SACC嗜神經(jīng)侵襲的機(jī)制。


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